El Mildiu Polvoriento de las Cucurbitaceas, Podosphaeria xanthii (Castag.) U. Braun and N. Shish en Panama.

Eduardo A. Esquivel R.


Generalidades.

En Panama, las cucurbitáceas han alcanzado una importancia significativa en el sector agrícola debido a la plantación de extensas areas para exportación.

Las más cultivadas actualmente son la sandía (Citrullus vulgaris Schrad.), el melón (Cucumis melo L) y el Zapallo o calabaza (Cucurbita pepo L.), aunque para consumo local son importantes el pepino (Cucumis sativus L.) y el Chayote (Sechium edule.)

Según la literatura consultada, en Panama solo esta reportado el Mildiu Lanoso , causado por Pseudoperonospora cubensis y el Polvoriento por Erysiphe chichoracearum (Esquivel, 1982). Debido a que recientemente se han encontrado plantaciones de Pepino afectadas por el Mildiu Polvoriento, causado por Podosphaeria xanthii, se hace este reporte preliminar de la enfermedad.

Taxonomia

Las dos especies más comúnmente informadas de mildiu polvoriento en cucurbitáceas son G. cichoracearum (sin. Erysiphe cichoracearum) y Podosphaera  xanthii (sin. Podosphaera fusca,  Sphaerotheca fuliginea). (Erisiphaceae)


Sintomas:

El mildiu polvoriento aparece en hojas, peciolos y yemas jóvenes de las cucurbitáceas, como una masa blanca con aspecto de ceniza, compuesta de micelio denso e incontable número de esporas. (Fotos 1 y 2) Bajo condiciones medioambientales favorables, la superficie de la hoja puede ser abarcada completamente, incluso llegar a cubrir ambas superficies (Sitterly,1978), y además provocar una defoliación prematura en las plantas. La infección puede alcanzar tejidos más profundos y llegar a tal grado que las hojas tomen una coloración amarilla, luego carmelita y finalmente secarse (Hansen,2000).

Patogeno.

El Podosphaera xanthii en Panama solo se ha encontrado hasta el momento en su fase asexual, produce conidios hialinos, elípticos, de paredes delgadas, de 20 – 40 x 15 – 25 micras y nacen en cadena a partir de conidióforos cortos, que no se ramifican y crecen en ángulo recto desde la superficie de la hoja (Fotografia 3 y 4)

Rango de Hospederos.

La P. xanthii esta reportada como patógeno ,a demás de las cucurbitáceas, en especies de Asteracea, Lamiaceae, Scrophulariaceae, Solanaceae y Verbenaceae.

Observaciones:

Esta observación del Mildiu Polvoriento se hizo en Pepino de variedad indeterminada, en el area de Capira, Panama Oeste en abril del 2012.

Referencias:

Esquivel,E.A. (1982). Catalogo de Enfermedades de las Plantas en la Republica de Panama. 123 p.

Gonzalez, M; Martinez,B. y Infante,D. ( 2010) Mildiu Polvoriento en las Cucurbitaceas. Rev. Protección Veg. vol.25 no.1 La Habana Jan.-Apr. 2010.

Hansen MA. Powdery Mildew of Cucurbits. 2000. http://www.pubs.ext.vt.edu/450/450-710/450-710.html .

Sitterly WR. Powdery Mildews of Cucurbits.(1978) In: Spenser DM, editor. The Powdery Mildews. Ed. Academia Press; p. 359-379.

Pseudobeltrania pezigii Pirozynski asociada a la Mancha Concentrica de la Hoja del Sigua, Nectandra sp. (Lauraceae) En Panama.

Eduardo A. Esquivel R.

Descripcion:

Encontrado en Hojas de Nectandra sp. (Lauraceae) en Panama Oeste, Panama.

Sintomas:

En las hojas de Nectandra sp, manchas circulares concéntricas de hasta 2 cm. De diámetro, de color marron claro, generalmente con la parte central perforada.(Foto 1 y 2).

Patogeno:

Conidioforos no ramificadas, rectas, lisas, de color marron mas claros hacia el apice ,surgiendo de células basales mas anchas discoidales, de hasta 250 micras de largo. Células conidiales terminales con numerosos dentículos notables. Conidios solitarias, acropleurogenas, simples biconicas alargadas, no limoniformes, algunas con una banda transversal hialina, de color marrón muy pálido, lisas, no septadas, 20 – 25 x 10 – 15 micras.

Fotografias:

Fotos 1 y 2. Sintomas Foliares asociados a P. penzigii.

Fotos 3 – 7, Detalles de Conidios y Conidioforos del P. penzigii.




Observaciones:

Pirozynski (1972) describe la Pseudobeltrania penzigii como una nueva especie encontrada en hojas caídas, en Tanzania. La descripción de este autor se ajusta exactamente al encontrado asociado a manchas foliares en hojas vivas de Nectandra en Panama.


Observaciones sobre hifomicetos tipo Beltrania en Lauráceas.

Ellis, (1971), describe la especie Hemibeltrania nectandrae (Bat.& Maia) Piroz., que había sido descrita originalmente por Batista y Maia en Brasil como Mammaria nectandrae Bat.& Maia.. De Castro et al (2007) describieron en Brasil Hemibeltrania urbanodendrii, asociada a Manchas Foliares en Urbanodendron verrucosum (Lauraceae), cuya descripción es idéntica a la H. nectandrae (Bat.& Maia) a excepción de la ramificación de los conidióforos, que no la menciona De Castro et al (2007) pero si Ellis (1971), pero también aclara que esta puede no darse. La Pseudobeltrania penzigii Piroz. Descrita en este trabajo, presenta conidióforos y conidios totalmente diferentes a la especie anterior, ubicándose en el Género Pseudobeltrania.



Fig.1 – 2 Comparacion entre descripción de H. urbanodendri y H. nectandrae.



Bibliografia.

De Castro, F., Castro,D., Weingart, R. ,Bezerra,J. (2007) Hemibeltrania urbanodendrii sp. nov. e Pseudobeltrania angamosensis: novas ocorrências fúngicas da floresta tropical estacional semidecidual montana brasileira. Braz. J. Microbiol. vol.38 no.4 São Paulo .

Ellis, M.B. (1971). Dematiaceous Hyphomycetes. Kew: Commonwealth Mycological Institute.

MENDES, M. A. S.; URBEN, A. F.; Fungos relatados em plantas no Brasil, Laboratório de Quarentena Vegetal. Brasília, DF: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia. Disponível em: http://pragawall.cenargen.embrapa.br/aiqweb/michtml/fgbanco01.asp. Acesso em: 30/12/2011.

Pirozynski, K.A. (1963). Beltrania and related genera. Mycological Papers 90: 1-37, 2 pls (12 figs), 17 figs.

Pirozynski, K.A. (1972). Microfungi of Tanzania. I. Miscellaneous fungi on oil palm. II. New hyphomycetes. Mycological Papers 129: 1-64, 32 figs, 1 plate.

La Roya del Algarrobo ,Hymenaea coubaryl L. (Fabaceae), causada por Uredo hymenaeae Mayor. (Uredinales) en Panama.

Eduardo Esquivel R.

Generalidades:

Se describe la Roya del Algarrobo, Hymenaea coubaryl L. encontrada en arboles adultos cerca de Capira, Panamá Oeste. Esta Roya fue descrita por primera vez en 1913 en Colombia (Mayor, 1913) Cummins (1978) menciona que este hongo es común en Mexico y el area del Caribe.


Descripcion:

Sintomas: En las hojas,Pustulas muy pequeñas, principalmente en el envés, dando la apariencia de manchas rojizas.

Patogeno: Uredinia en el envés de las hojas, subepidermales, redondas, abiertas por un poro, con abundantes parafisis perisfericas, cilíndricas o clavadas, hialinas. Uredosporos de 22-30 x 15 – 20 micras, la mayoría elipsoides alargados, de color amarillo marron, ligeramente mas oscuros en el apice, equinulados, 2 a 3 poros cerca del apice.

Observaciones:

Se trata del primer reporte de este hongo fitopatogeno en Panama (Piepenbring, 2006) .


Fotografias:



Fotos 1 y 2. Uredosporos de U. hymeneae.

Referencias:


Cummins, G. (1978). Rust fungi on Legumes and Composites in North America. Univ. Arizona Press. P.400

Mayor, E. (1913). Contribution à l’etude des urédinées de Colombie. Mémoires de la Société Neuchâteloise de Sciences Naturelles 5: 442-599.

Piepenbring, M. ( 2006 ) Checklist of Fungi in Panama. Preliminary Version. Rev.Puente Biologico. UACH, Panama. Vol. 1. 194 p.

La Roya del Algarrobo ,Hymenaea coubaryl L. (Fabaceae), causada por Uredo hymenaeae Mayor. (Uredinales) en Panama.

Eduardo Esquivel R.

Generalidades:

Se describe la Roya del Algarrobo, Hymenaea coubaryl L. encontrada en arboles adultos cerca de Capira, Panamá Oeste. Se determino que el patogeno era el uredo hymeneae Mayor,esta Roya fue descrita por primera vez en 1913 en Colombia (Mayor, 1913) Cummins (1978) menciona que este hongo es común en Mexico y el area del Caribe.

Descripcion:

Sintomas: En las hojas,Pustulas muy pequeñas, principalmente en el envés, dando la apariencia de manchas rojizas.

Patogeno: Uredinia en el envés de las hojas, subepidermales, redondas, abiertas por un poro, con abundantes parafisis perisfericas, cilíndricas o clavadas, hialinas. Uredosporos de 22-30 x 15 – 20 micras, la mayoría elipsoides alargados, de color amarillo marron, ligeramente mas oscuros en el apice, equinulados, 2 a 3 poros cerca del apice.

Observaciones:

Se trata del primer reporte de este hongo fitopatogeno en Panama (Piepenbring, 2006)

Referencias:

Cummins, G. (1978). Rust fungi on Legumes and Composites in North America. Univ. Arizona Press. P.400.

Mayor, E. (1913). Contribution à l’etude des urédinées de Colombie. Mémoires de la Société Neuchâteloise de Sciences Naturelles 5: 442-599.

Piepenbring, M. ( 2006 ) Checklist of Fungi in Panama. Preliminary Version. Rev.Puente Biologico. UACH, Panama. Vol. 1. 194 p.

Una nueva especie de Hyaloperonospora (Omycetes, Peronosporaceae) en Plumeria púdica Jaqc, (Aponcynaceae) en Panamá. Reporte Preliminar.

Eduardo A. Esquivel R.

La Caracucha o Frangipani, Plumeria spp. (Apòcynaceae) Es un ornamental muy conocido en el Trópico. En Panamá se cultivan varias especies y variedades, incluyendo a la Plumeria púdica, que es una especie nativa del area. De manera general, las Plumerias son poco atacadas por enfermedades, siendo la mas común la Roya (Coleosporium plumeriae ), pero que no parece afectar su crecimiento y floración.

A principios del 2011, el autor observo, en Panamá Oeste, plantones de P. púdica afectados por un tipo de Mildew, que producía secamiento y caída de hojas, en condiciones de alta humedad. Las observaciones preliminares al microscopio demostraron que se trataba de una especie de Peronospora, con esporagioforos característicos y esporangios globosos, hialinos, que median 25 – 35 x 20 – 30 micras. Según la mas reciente clasificación, las especies con esporangios hialinos se ubicarían en el genero Hyaloperonospora.

Según el Dr. Hermann Voglmayr , de la Universidad de Austria (Dept. Systematic and Evolutionary Botany Faculty Center Biodiversity). especialista en este género, las únicas especies de Plasmopara reportadas hasta ahora en Apocynaceae son Plasmopara vincetoxici; en Vincetoxicum , y – Plasmopara gonolobi, en Gonolobus. (Comunicación Personal.). Por lo que seria muy posible que se tratara de una nueva especie. Se acordó establecer una colaboración para investigación y publicación sobre esta especie, por lo que se envió al Dr. Voglmayr un espécimen especialmente preparado de hojas de Plumeria con la enfermedad, para continuar con el análisis de ADN y estudios morfológicos. Esta muestra llego a Austria en perfectas condiciones y actualmente se están haciendo los trabajos taxonómicos detallados.

En Panamá a la fecha, solo se han reportado dos especies de Peronospora: la Peronospora destructor (Berk.) Casp.ex Berk. En Cebolla, y el Peronospora parasítica (Prs.) de Bary, en Repollo. (Piepenbring, 2006).

Fotografias:

Fotos 1 y 2. Sintomas Foliares.

Fotos 3 -5. Detalles de Esporangioforo y esporangios-

Referencias:

Gustavsson,A. ( 1995 ) Bibliography of Peronospora. (Phytopathological Papers) CABI Publishing edition, Paperback.

Piepenbring.M. (2006) ) Checklist of Fungi in Panama. Preliminary Version. Rev.Puente Biologico. UACH, Panama. Vol. 1. 194 p

CONSIDERACIONES SOBRE LA TAXONOMIA DE ESPECIES FITOPATOGENAS DE Colletotrichum (Fungi: Glomerellaceae) EN PANAMA.

Eduardo A. Esquivel R.

Generalidades.

El Género Colletotrichum fue descrito por primera vez en 1831 por Corda . Es uno de los géneros de hongos fitopatogenos más comunes y más importantes. Se puede decir que cara especie cultivada en el mundo es susceptible a una o mas especies de Colletotrichum.

El hongo Colletotrichum es causante de pudriciones post-cosecha , antracnosis y tizones de partes aéreas de las plantas. Las especies de éste género son causantes de las mayores perdidas económicas, especialmente en frutos, vegetales y ornamentales. El Colletotrichum causa daños severos en cultivos alimenticios de importancia, como Bananos, Yuca, sorgo, Frijoles, Tomate y Guandú. Cultivados en trópicos y subtropicos. (Abang,2003; Damm et al, 2009; Esquivel, 1997; Freeman, 2000; Lees & Hilton, 2003; Smith, 1990: Waller, 1992.)

La Hemibiotropia Intracelular es una característica distintiva en la patología del Colletotrichum. Seguido de la penetración de la epidermis del huésped, la mayoría de las especies de Colletotrichum inicialmente colonizan las células vivas de la planta, rompiendo la pared celular pero sin penetrar la membrana plasmática de la célula huésped sin causar una muerte progresiva de células. Después de un periodo variable de tiempo, que depende del patosistema específico, su hábito de crecimiento se activa en necrotropia, y se da una muerte smasiva de células y destrucción de tejidos. Este cambio de su biología esta asociado con notables cambios en su hifa, morfológicos, genéticos y fisiológicos. Las estructuras características de las infecciones Biotropicas y Necroticas pueden ser distinguidas citológicamente. Muchas especies de Colletotrichum tienen la capacidad de producir infecciones asintomáticas o latentes en varios tejidos de plantas, incluyendo frutas no maduras, por lo que están entre los patógenos post-cosecha más importantes.

La genética de Colletotrichum es bastante compleja. Se sabe que en cada especie existen numerosas formas, razas o patotipos, especificas de especies de plantas. Aunque algunas especies son polífagas, es decir, pueden atacar especies de plantas de familias muy diversas.
El actual estatus taxonómico de las especies de Colletotrichum no esta claro (Sreenivasaprasad & Talhinhas, 2005). El amplio rango de hospedantes de muchas especies ha causado problemas para los fitopatologos que necesitan identificar los patógenos específicos para cada enfermedad. Las técnicas moleculares han suministrado datos adicionales para ayudar a la identificación de este hongo. (Sreenivasaprasad et al., 1996; Moriwaki et al., 2002; Photita et al., 2005; Du et al., 2005). Gloeosporium se diferencia del Colletotrichum, por no producir setas en los acervulos, pero otros consideran que la producción de setas en esta especie depende de factores como sustrato y condiciones de crecimiento. Se considera que el estado perfecto del Colletotrichum es el Glomerella.

En Panamá el Colletotrichum ha causado severos problemas en cultivos como el Ñame (Dioscorea alata) y el Guandú (Cajanus cajan), y existen cerca de 30 especies reportadas en numerosos hospedantes.


Identificacion de Especies de Colletotrichum.


La identificación simple basada en características morfológicas del hongo es posible en algunas especies es posible debido a la asociación con el hospedante, y características de los conidios , apresorios y esclerotias, lo que requiere del cultivo artificial del hongo y la observación de la germinación de las conidias.

En la Figura 1. Se observan la forma de Conidias y apresorios de cinco especies representativas de Colletotrichum. En la Tabla 1 se detallan otras características como la presencia o no de esclerocios y la forma y tamaño de las conidias.

Figura 1. Conidia y apresoria de especies de Colletotrichum . (A) C. coccodes; (B) C. crassipes; (C) C. dematium; (D) C. gloeosporioides; (E) C. graminicola. (Cano et al, 2004).



Tabla 1. Principales características morfológicas en la diferenciación de cinco especies fitopatogenas de Colletotrichum

C. coccodes

Esclerocio: Presente.Globoso- Apresorio: Margen entero. Conidio: Recta; fusiforme, abruptamente redondeada en los extremos., 16-22 por 3-4 qm.

C. crassipes.

Esclerocio: Ausente. Apresorio: Margen crenado o fuertemente lobulado. Conidio: recto; cilíndrico; ápice obtuso; base truncada; 11-20 por 6-8 μm.

C. dematium

Esclerocio. Presente, Conico. Apresorio: Margen entero o lobulado en forma irregular. Conidio: recta; cilíndrica; ápice obtuso; base truncada; 11-20 por 6-8 μm.

C. gloeosporioides

Esclerocio: ausente . Apresorio. margen entero, algunas vece slobulado. Conidio: Recto; cilíndrico; ápice obtuso; base truncada; 6-25 por 4-6 μm.

C. graminicola

Esclerocio: Presente, irregular. Apresorio: margen muy irregular. Conidio: Falcado; fusiforme; gradualmente puntiagudo en cada extremo; 24-28 por 4-6 mu.


Referencias.


Abang M M. Genetic diversity of Colletotrichum gloeosporioides Penz. causing anthracnose disease of yam (Dioscorea spp.) in Nigeria. Bibliotheca Mycologia. 2003;197:20–33.

Bailey, J. A., and M. J. Jegger. 1992. Colletotrichum: biology, pathology and control. CAB International, Wallingford, United Kingdom.

Braithwaite, K. S., J. A. G. Irwin, and J. M. Manners. 1990. Ribosomal DNA as a molecular taxonomic marker for the group species Colletotrichum gloeosporioides. Aust. Syst. Bot. 3:733-738.

Bryson, R. J., C. E. Caten, D. W. Hollomon, and J. A. Bailey. 1992. Sexuality and genetics of Colletotrichum. In: Bailey, J. A., and M. J. Jeger (eds). Colletotrichum: Biology, Pathology and Control. CAB International. Wallingford, UK. pp: 27–46.

Cano,J.; Guarro.J. and Gene,J. (2004 ) Molecular and Morphological Identification of Colletotrichum Species of Clinical Interest. J. Clin. Microbiol. June 2004 vol. 42 no. 6 2450-2454 –
Damm, U.; Woundemberg,J.; Cannon,P. and Crous,P. (2009) Colletotrichum species with curved conidia from herbaceous hosts. Fungal Diversitu 39: 45-87.

Du M, Schardl CL, Vaillancourt LJ. Using mating-type gene sequences for improved phylogenetic resolution of Colletotrichum species complexes. Mycologia. 2005;97(3):641–658. doi: 10.3852/mycologia.97.3.641

Dyko BJ, Mordue JEM. 1979. Colletotricum acutatum. CMI Descriptions of pathogenic fungi and bacteria No. 630. CAB International.

Esquivel, E. A. (1982) Catalogo de Enfermedades de las Plantas en la Republica de Panama. 123 p.

Esquivel,E.A.(1997). Etiologia de las pudriciones del fruto en Pimenton (Capsicum annum L.) y Aji Picante (Capsicum spp.,) en Panama Oeste. Res. Congr. Nac. Ciencia y tecnologia. SENACYT-CYTED. Panamá. P31.

Freeman, S. 2000. Genetic diversity and host specificity of Colletotrichum species on various fruits. In: Prusky, D. S. Freeman and M. Dickman (eds). Colletotrichum: Host Specificity, Pathology, and Host–Pathogen Interaction. American Phytopathological Society Press. St. Paul, Minnesota. USA. pp: 131–144.

Johnston PR, Jones D. 1997. Relationships among Colletotrichum isolates from fruit rots assessed using rRNA sequences. Mycologia 89:420–430.

Lees, A. K.; Hilton, A. J. (2003). "Black dot (Colletotrichum coccodes): An increasingly important disease of potato". Plant Pathology 52: 3.

Mordue, J. E. M. 1971. Glomerella cingulata. In: C.M.I. Descriptions of Pathogenic Fungi and Bacteria No. 315. Commonwealth Agriculture Bureaux. The Eastern Press. Great Britain, U. K. 2 p.

Moriwaki J, Tsukiboshi T, Sato T. Grouping of Colletotrichum species in Japan based on rDNA sequences. Journal of General Plant Pathology. 2002;68(4):307–320.

Photita W, Taylor PWJ, Ford R, Lumyong P, McKenzie HC, Hyde KD. Morphological and molecular characterization of Colletotrichum species from herbaceous plants in Thailand. Fungal Diversity. 2005;18:117–133.

Smith, B. J., and L. L. Black. 1990. Morphological, cultural, and pathogenic variation among Colletotrichum species isolated from strawberry. Plant Dis. 74: 69–76.

Sreenivasaprasad S, Mills P, Brown A. Nucleotide sequence of the rDNA spacer 1 enables identification of isolates of Colletotrichum as C. acutatum . Mycological Research. 1994;98:186–188.

Sreenivasaprasad S, Mills P, Meehan BM, Brown A. Phylogeny and systematics of 18 Colletotrichum species based on ribosomal DNA spacer sequences. Genome. 1996;39(3):499–512. doi: 10.1139/g96-064

Sutton BC. 1980. The Coelomycetes. Fungi Imperfecti with pycnidia, acervuli and stromata. Surrey, England: Commonwealth Mycological Institute. 696 p.

Waller, J. M. 1992. Colletotrichum diseases of perennial and other cash crops. In: Prusky, D., S. Freeman, and M. Dickman (eds). Colletotrichum Host Specificity, Pathology, and Host–Pathogen Interaction. American Phytopathological Society Press. St. Paul, Minnesota, USA. pp: 167–185.

Especies de Colletotrichum y Hospederos reportados en Panama

Eduardo A. Esquivel R.

Generalidades:

Se presenta una relación de las especies de Colletotrichum y Gloeosporium reportadas en Panama asociadas a plantas. (Esquivel, 1982, 1997, Rojas et al, 2010)).

Lista de Especies/hospedante.

Colletotrichum acutatum - Aji (Capsicum spp.)

Colletotrichum agaves (Cav.) Sacc. - Maguey (Agave Americana):

Colletotrichum blighiae Gonz.Frag.et Cif.- Akee (Blighia sapida).

Colletotrichum cajani Henn. – Guandu. (Cajanus cajan)

Colletotrichum capsici -- Pimenton (Capsicum annum): Aji (Capsicum sp.)

Colletotrichum cerei Earle- Galan de Noche ( Cereus phyllanthus DC.)

Colletotrichum chardonianum Nolla- Cebolla (Allium cepa):

Colletotrichum circinans (Berk.) Vogl. – Cebolla (Allum cepa): Cebollina (Allium fistulosum);

Colletotrichum coffeanum Noack.- Café (Coffea arabica)

Colletotrichum eucalyptii Bit. – Eucalipto- (Eucalyptus citridora): Eucalyptus saligna;

Colletotrichum falcatum Went.- Caña de Azucar (Saccharum offiocinarum)

Colletotrichum gloeosporioides Penz. Marañon (Anacardium occidentale); mango (Manguifera indica); Chirimoya (Annona cherimolia): Guanabana (Annona muricata); Anonita (Annona squamosa): Bignonia ígnea; Pyrostegia venusta; Barrigon (Bombax barrigon), ; Aster (Aster sp.) ; Batata (Ipomoea batatas): Ñame (dioscorea alata): Dioscorea sp. : Hule (Hevea brasiliensis); Yuca (Manihot utilissima): Aguacate (Persea americana): Tamarindo (tamarindus indica): Azucena (Lilium candidum): Nance (Byrsonimia crassifolia): Algodón (Gossypium hyrsutum): Masa de Pan (Artocarpus integrifolia): Jackfruit (Artocarpus heterophyllus): Higo (Ficus carica): Hule (Ficus elástica ); Platano (Musa sp.); Banano (Musa sp.); Guayaba. (Psidium guajaba); Orquidea (Cattleya sp.); Carambola (Averrhoa carambola): Membrillo (Cydonia oblonga): Manzano (malus sp.): Pera (Pysrus communis): Café (Coffea arabica): Naranja Agria (Citrus aurantium): Sidra (Citrus medica): Toronja,(Citrus paradisi); Mandarina (Citrus reticulata): Naranja Dulce (citrus sinensis): Fortunella margarita; apot (achras zapote); Cacao (Theobroma cacao): Pimenton (Capsicum annum), Aji (Capsicum spp.). Palma Africana (elaeis guineensis); Palma real Enana (Veitchia merilli);

Colletotrichum graminícola (Ces,) Wils. – Pasto Colchon (Axonopus sp.): Cabezona (Paspalum virgatum): Pasto Johnson (Sorghum halapense): Sorgo (sorghum vulgare): Maiz (Zea maydis):

Colletotrichum ignotum.- Cacao (Theobroma cacao).

Colletotrichum lagenarium (Pass.) Ell.&Ev. – Sandia (Citrullus vulgaris), Melon (Cucumis melo): Pepino (Cucumis sativum): Zapallo (Cucurbita pepo): Tula (lagenaria vulgaris): Chayote (Sechium edule):

Colletotrichum lineola Cda. – Sorgo (Sorghum vulgare)

Colletotrichum lobeliae F. Stev. -- Lobelia (Lobelia sp.)

Colletotrichum lindemuthianum (S.& Mag) Br.et Cav. – Frijol (Phseolus vulgaris): Haba (Vicia faba): Frijol Chiricano (Vigna sinensis):

Colletotrichum nigrum Ell.et Halst. – Aji (Capsicum frutescens):

Colletotricum trifolii Bain.- Trebol (Trifolium sp.):

Colletotrichum tropicale – Cacao (Theoborma cacao)

Colletotrichum peregrinum Pass - Polyscias quilfoylei. (Araliaceae)

Colletotrichum sp. - Begonia spicata L. : Papaya (carica papaya); Clavel (Dianthus caryophyllus); Arroz (Oryza sativa): Mani (Arachis hypogea): Soya (Gycine max): Alfalfa (medicago sativa): Eugenia sp. ; Vainilla (vainilla planifolia): Granada (Punica granatum): Durazno (Prunus pérsica); Fruta de Mono (Posoqueria latifolia): Pimenton (Capsicum annum):
Aji (Capsicum frutescens): Tomate (Lycopersicum sculentum): Berenjena (Solanum melongena): Papa (Solanum tuberosum): Cacao (Theobroma cacao): Palma Africana (Elaeis guineensis).

Colletotrichum spinaciae Ell.& Ev. – Espinaca (Spinacia oleracea)

Colletotrichum theobromicola. Cacao (Theobroma cacao)

Gloeosporium passiflorae Muell.et Chupp.- maracuya (Passiflora edulis), granadilla (Passiflora quadrangularis):

Gloeosporium limetticola Claus.- Limon (Citrus limón);

Gleosporium mangostanae Cif.- Mangostan (Garcinia mangostana)

Gloeosporium sp. – Coco (Cocos nucifera):

Referencias:

Esquivel, E. A. (1982) Catalogo de Enfermedades de las Plantas en la Republica de Panama. 123 p.

Esquivel,E.A.(1997). Etiologia de las pudriciones del fruto en Pimenton (Capsicum annum L.) y Aji Picante (Capsicum spp.,) en Panama Oeste. Res. Congr. Nac. Ciencia y tecnologia. SENACYT-CYTED. Panama. P31.

Rojas,E.; Rehener,S.; and Samuel,G. ( 2010) Colletotrichum gloeosporioides s.l. associated with Theobroma cacao and other plants in Panamá: multilocus phylogenies distinguish host-associated pathogens from asymptomatic endophytes. November/December 2010 vol. 102 no. 6 1318-1338